Osservazioni conclusive
In this study, we aimed to fill gaps in our basic understanding of immune memory after COVID-19. This required simultaneous measurement of circulating antibodies, memory B cells, CD8+ T cells, and CD4+ T cells specific for SARS-CoV-2, in a group of subjects with a full range of disease, and distributed from short time points after infection to 8 months later. By studying these multiple compartments of adaptive immunity in an integrated manner, we observed that each component of SARS-CoV-2 immune memory exhibited distinct kinetics.
I titoli di picco di IgG erano durevoli, con modeste diminuzioni dei titoli a 6-8 mesi di PSO a livello di popolazione. I titoli anticorpali neutralizzanti RBD IgG e SARS-CoV-2 PSV erano potenzialmente altrettanto stabili, in linea con il fatto che il dominio RBD dello spike era il bersaglio anticorpale neutralizzante dominante. Abbiamo raccolto dati in due momenti per la maggior parte degli individui longitudinali qui. È ben noto che l’entità della risposta anticorpale contro SARS-CoV-2 è altamente eterogenea tra gli individui. Abbiamo osservato che le risposte anticorpali iniziali eterogenee non collassavano in una memoria anticorpale circolante omogenea; piuttosto, l’eterogeneità è anche una caratteristica centrale della memoria immunitaria per questo virus. Per gli anticorpi, le risposte hanno abbracciato un intervallo di circa 200 volte. Inoltre, questa eterogeneità significa che saranno necessari studi longitudinali a lungo termine per definire con precisione la cinetica anticorpale per SARS-CoV-2. Riportiamo i modelli statistici più semplici che spiegano i dati. Questi adattamenti della curva non confutano cinetiche più complesse come la cinetica sovrapposta, ma quei modelli richiederebbero un campionamento longitudinale molto più denso negli studi futuri. Biologicamente, gli anticorpi IgG con un’emivita di ~ 21 giorni e l’entità della risposta anticorpale nel tempo, riflettono gli anticorpi prodotti prima dalle plasmacellule a vita breve e poi dalle plasmacellule a vita lunga, con la maturazione dell’affinità che influenza anche l’entità apparente in saggi di legame convenzionali e saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG. Riportiamo i modelli statistici più semplici che spiegano i dati. Questi adattamenti della curva non confutano cinetiche più complesse come la cinetica sovrapposta, ma quei modelli richiederebbero un campionamento longitudinale molto più denso negli studi futuri. Biologicamente, gli anticorpi IgG con un’emivita di ~ 21 giorni e l’entità della risposta anticorpale nel tempo, riflettono gli anticorpi prodotti prima dalle plasmacellule a vita breve e poi dalle plasmacellule a vita lunga, con la maturazione dell’affinità che influenza anche l’entità apparente in saggi di legame convenzionali e saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG. Riportiamo i modelli statistici più semplici che spiegano i dati. Questi adattamenti della curva non confutano cinetiche più complesse come la cinetica sovrapposta, ma quei modelli richiederebbero un campionamento longitudinale molto più denso negli studi futuri. Biologicamente, gli anticorpi IgG con un’emivita di ~ 21 giorni e l’entità della risposta anticorpale nel tempo, riflettono gli anticorpi prodotti prima dalle plasmacellule a vita breve e poi dalle plasmacellule a vita lunga, con la maturazione dell’affinità che influenza anche l’entità apparente in saggi di legame convenzionali e saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG. ma quei modelli richiederebbero un campionamento longitudinale molto più denso negli studi futuri. Biologicamente, gli anticorpi IgG con un’emivita di ~ 21 giorni e l’entità della risposta anticorpale nel tempo, riflettono gli anticorpi prodotti prima dalle plasmacellule a vita breve e poi dalle plasmacellule a vita lunga, con la maturazione dell’affinità che influenza anche l’entità apparente in saggi di legame convenzionali e saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG. ma quei modelli richiederebbero un campionamento longitudinale molto più denso negli studi futuri. Biologicamente, gli anticorpi IgG con un’emivita di ~ 21 giorni e l’entità della risposta anticorpale nel tempo, riflettono gli anticorpi prodotti prima dalle plasmacellule a vita breve e poi dalle plasmacellule a vita lunga, con la maturazione dell’affinità che influenza anche l’entità apparente in saggi di legame convenzionali e saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG. con maturazione dell’affinità influenzando anche l’entità apparente nei saggi di legame convenzionali e nei saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG. con maturazione dell’affinità influenzando anche l’entità apparente nei saggi di legame convenzionali e nei saggi di neutralizzazione. Complessivamente, a 5-8 mesi di PSO, quasi tutti gli individui erano positivi per SARS-CoV-2 spike e RBD IgG.
In particolare, le cellule B di memoria specifiche per la proteina spike o RBD sono state rilevate in quasi tutti i casi di COVID-19, senza emivita apparente da 5 a 8 mesi dopo l’infezione. Altri studi sulle cellule B della memoria RBD riportano risultati simili ( 50 , 60 ). È stato osservato che la memoria delle cellule B per alcune altre infezioni è di lunga durata, compresi 60+ anni dopo la vaccinazione contro il vaiolo ( 61 ) o 90+ anni dopo l’infezione con l’influenza ( 62 ). Le emivite delle cellule T di memoria osservate in oltre 6 mesi di PSO in questa coorte (da ~125 a 225 giorni per le cellule CD8 + e da ~94 a 153 giorni per le cellule T CD4 + ) erano paragonabili ai 123 giorni t1/ 2 osservate per la memoria CD8 +Cellule T dopo immunizzazione contro la febbre gialla ( 56 ). Anche la memoria delle cellule T SARS-CoV-2 a 6 mesi è stata riportata in un altro studio ( 63 ). In particolare, la durata di una frazione delle cellule CD8 + T di memoria specifiche del virus della febbre gialla possedeva una t 1/2 stimata di 485 giorni mediante etichettatura del deuterio ( 56 ). Utilizzando approcci diversi, gli studi hanno determinato che la durata a lungo termine delle cellule di memoria CD4 + T contro il vaiolo, per un periodo di molti anni, è stimata in t 1/2 di ~ 10 anni ( 61 , 64), che è anche coerente con il recente rilevamento di cellule T specifiche per SARS-CoV 17 anni dopo l’infezione iniziale ( 65 ). Questi dati suggeriscono che la memoria delle cellule T potrebbe raggiungere un plateau più stabile, o una fase di decadimento più lenta, oltre i primi 8 mesi dopo l’infezione.
Sebbene la memoria immunitaria sia la fonte dell’immunità protettiva a lungo termine, non è possibile trarre conclusioni dirette sull’immunità protettiva sulla base della quantificazione degli anticorpi circolanti SARS-CoV-2, delle cellule B della memoria, delle cellule T CD8 + e delle cellule T CD4 + , perché meccanismi di immunità protettiva contro SARS-CoV-2 o COVID-19 non sono definiti negli esseri umani. Tuttavia, si possono fare alcune ragionevoli interpretazioni. Gli anticorpi sono l’unico componente della memoria immunitaria in grado di fornire un’immunità veramente sterilizzante. Studi di immunizzazione in primati non umani hanno indicato che titoli di neutralizzazione circolanti di ~200 possono fornire un’immunità sterilizzante contro un challenge URT a dosi relativamente elevate ( 66), e titoli neutralizzanti di ~ 3400 possono fornire un’immunità sterilizzante contro un test URT a dose molto elevata ( 67 ), sebbene i confronti diretti non siano possibili perché i test degli anticorpi neutralizzanti non sono stati standardizzati ( 3 ). Le conclusioni sono anche limitate dalla quantità complessiva limitata di dati sull’immunità protettiva alla SARS-CoV-2.
Oltre a sterilizzare l’immunità, le risposte immunitarie che confinano SARS-CoV-2 all’URT e alla cavità orale minimizzerebbero la gravità della malattia COVID-19 a quella di un “raffreddore comune” o di una malattia asintomatica. Questo risultato è l’obiettivo principale degli attuali studi clinici sui vaccini COVID-19 ( 3 , 68 ). Tale risultato potrebbe essere potenzialmente mediato da una miscela di cellule T CD4 + di memoria, cellule T CD8 + di memoria e cellule B di memoria specifiche per anticorpi neutralizzanti anamnestici che producono RBD, sulla base di meccanismi d’azione in modelli murini di altre infezioni virali ( 69 – 71 ). Nelle infezioni umane da COVID-19, cellule CD4 + T specifiche per SARS-CoV-2 e CD8 +Le cellule T sono associate a una minore gravità della malattia COVID-19 durante un’infezione da SARS-CoV-2 in corso ( 5 ). La rapida sieroconversione è stata associata a cariche virali sostanzialmente ridotte nella malattia acuta nell’arco di 14 giorni ( 29). Entrambe queste associazioni sono coerenti con l’ipotesi che le cellule T e B di memoria SARS-CoV-2 sarebbero in grado di limitare sostanzialmente la diffusione di SARS-CoV-2 e/o la carica virale cumulativa, con conseguente riduzione della gravità della malattia da COVID-19. La probabilità di tali esiti è anche strettamente legata alla cinetica dell’infezione, poiché le risposte delle cellule B e T della memoria possono richiedere da 3 a 5 giorni per rispondere con successo a un’infezione. Come notato sopra, dato il decorso relativamente lento del COVID-19 grave nell’uomo, i compartimenti di memoria immunitaria a riposo possono potenzialmente contribuire in modo significativo all’immunità protettiva contro la polmonite o il COVID-19 secondario grave. La presenza di titoli anticorpali neutralizzanti sottosterilizzanti al momento dell’esposizione a SARS-CoV-2 ridurrebbe le dimensioni dell’infezione iniziale,37 , 72 – 74 ) e le osservazioni di SARS-CoV-2 vaccini in primati non umani ( 48 , 67 , 75 ).
Lo studio attuale presenta alcune limitazioni. Per una comprensione più precisa della cinetica di durata degli anticorpi specifici per SARS-CoV-2 sarebbero necessari dati longitudinali per ciascun soggetto, con almeno tre punti temporali per soggetto. Tuttavia, gli attuali dati trasversali descrivono bene le dinamiche delle cellule B di memoria SARS-CoV-2, delle cellule CD8 + T e delle cellule T CD4 + in 8 mesi di PSO. Questo studio non era sufficientemente potente per controllare molte variabili contemporaneamente. Inoltre, qui è stata valutata la memoria circolante; è possibile che la memoria immunitaria URT locale sia una componente minima, moderata o grande della memoria immunitaria dopo un’infezione primaria da SARS-CoV-2. Questo resta da determinare.
Segnalazioni di casi individuali mostrano che si stanno verificando reinfezioni da SARS-CoV-2 ( 76 , 77 ). Tuttavia, uno studio su 2800 persone non ha riscontrato re-infezioni sintomatiche in una finestra di ~118 giorni ( 78 ), e uno studio su 1246 persone non ha osservato re-infezioni sintomatiche in 6 mesi ( 79). Abbiamo osservato l’eterogeneità nell’entità delle risposte immunitarie adattative a SARS-CoV-2 che persiste nella fase di memoria immunitaria. È quindi possibile che una frazione della popolazione infetta da SARS-CoV-2 con bassa memoria immunitaria diventi suscettibile alla reinfezione in tempi relativamente brevi. Sebbene il genere e la gravità della malattia contribuiscano entrambi all’eterogeneità della memoria immunitaria qui riportata, la fonte di gran parte dell’eterogeneità nella memoria immunitaria per SARS-CoV-2 è sconosciuta e merita un ulteriore esame. Forse l’eterogeneità deriva da una bassa carica virale cumulativa o da un piccolo inoculo iniziale in alcuni individui. Tuttavia, i nostri dati mostrano che la memoria immunitaria in almeno tre compartimenti immunologici era misurabile in circa il 95% dei soggetti da 5 a 8 mesi di PSO,
Materiali e metodi
Soggetti umani
Gli Institutional Review Board dell’Università della California, San Diego (UCSD; 200236X) e il La Jolla Institute for Immunology (LJI; VD-214) hanno approvato i protocolli utilizzati per la raccolta del sangue per i soggetti con COVID-19 che hanno donato in tutti i siti diversi rispetto al monte Sinai. La Icahn School of Medicine at Mount Sinai IRB ha approvato i campioni raccolti presso questa istituzione a New York City (IRB-16-00791). Tutti i soggetti umani sono stati valutati per la capacità decisionale medica utilizzando una valutazione standardizzata e approvata e hanno dato volontariamente il consenso informato prima di essere arruolati nello studio. I criteri di inclusione dello studio includevano una diagnosi di COVID-19 o sospetto COVID-19, età pari o superiore a 18 anni e volontà e capacità di fornire il consenso informato. Sebbene non sia un criterio di inclusione rigoroso, prove di test positivi basati sulla reazione a catena della polimerasi (PCR) per SARS-CoV-2 sono state richieste ai soggetti prima della partecipazione. Un totale di 145 casi è stato confermato SARS-CoV-2 positivo da test basati su PCR (Tabella 1 ). Due soggetti sono risultati negativi alla PCR SARS-CoV-2 ( Tabella 1 ). Il resto non è stato testato o non aveva risultati del test disponibili per la revisione ( Tabella 1). Sono stati quindi esclusi i soggetti che avevano una storia medica e/o sintomi coerenti con COVID-19, ma non avevano test positivi basati su PCR per SARS-CoV-2 e successivamente avevano test sierologici di laboratorio negativi per SARS-CoV-2; cioè, tutti i casi di COVID-19 in questo studio sono stati confermati da SARS-CoV-2 PCR o sierodiagnostica SARS-CoV-2, o entrambi. Erano ammessi a partecipare adulti di tutte le razze, etnie, età e sesso. I criteri di esclusione dallo studio includevano la mancanza di volontà di partecipare, la mancanza di capacità di fornire il consenso informato o una controindicazione medica alla donazione di sangue (p. es., grave anemia). I campioni dei soggetti a LJI sono stati ottenuti da individui in California e in almeno altri sette stati.
I metodi di raccolta e trattamento del sangue presso LJI sono stati eseguiti come descritto in precedenza ( 5 ). In breve, il sangue intero è stato raccolto tramite flebotomia in provette con separatore di siero acido citrato destrosio (ACD) (SST) o acido etilendiamminotetraacetico (EDTA) e trattato per l’isolamento di cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC), siero e plasma. La maggior parte dei donatori è stata sottoposta a screening per i sintomi prima di programmare i prelievi di sangue e doveva essere asintomatica e a circa 3-4 settimane dall’insorgenza dei sintomi al momento del prelievo di sangue iniziale a UCSD o LJI, rispettivamente. I campioni sono stati codificati e quindi deidentificati prima dell’analisi. Altri sforzi per mantenere la riservatezza dei partecipanti includevano i campioni di etichettatura con numeri di identificazione codificati. Una panoramica delle caratteristiche dei soggetti con COVID-19 è fornita inTabella 1 .
La gravità della malattia COVID-19 è stata valutata da 0 a 10 utilizzando un sistema di punteggio numerico basato sulla scala ordinale NIH ( 5 , 80 ). È stato applicato un descrittore categorico basato su questo sistema di punteggio: “asintomatico” per un punteggio di 1, “lieve” per un punteggio da 2 a 3, “moderato” per un punteggio da 4 a 5 e “grave” per un punteggio di 6 o più. I soggetti con un punteggio numerico di 4 o superiore hanno richiesto il ricovero ospedaliero (incluso il ricovero per osservazione) per la gestione del COVID-19. Solo uno dei 13 soggetti ricoverati è condiviso dal precedente studio di COVID-19 acuto ( 5). I giorni di PSO sono stati determinati in base alla differenza tra la data del prelievo di sangue e la data dei primi sintomi segnalati coerenti con COVID-19. Per i soggetti asintomatici, è stato utilizzato il giorno del primo test positivo basato sulla PCR SARS-CoV-2 al posto della data dei primi sintomi di COVID-19 segnalati.
Proteine ricombinanti
La proteina spike stabilizzata [2P ( 81 )] e l’RBD sono stati espressi nelle cellule HEK293F. In breve, il DNA che esprime la proteina spike stabilizzata e l’RBD sono stati subclonati in vettori phCMV separati e trasfettati in cellule HEK293F con un rapporto di 1 mg di DNA per 1 litro di cellule. Le cellule sono state coltivate a 37°C in un agitatore incubatore impostato a 125 rpm, 80% di umidità e 8% di CO 2. Quando la vitalità cellulare è scesa al di sotto dell’80% (in genere da 4 a 5 giorni), i terreni sono stati raccolti e centrifugati per rimuovere le cellule. Il reagente Biolock è stato aggiunto al mezzo surnatante per rimuovere l’eventuale biotina in eccesso. Il mezzo è stato quindi filtrato attraverso un filtro da 0,22 µm per rimuovere gli aggregati Biolocked. Le proteine sono state purificate utilizzando colonne Streptrap HP 5 ml (Cytiva) utilizzando 100 mM Tris, 100 mM NaCl come tampone di lavaggio e 100 mM Tris, 100 mM NaCl, 2,5 mM d-Destiobiotina come tampone di eluizione. Le frazioni eluite per le proteine spike sono state concentrate su filtri Amicon da 100 kDa e gli RBD sono stati concentrati su filtri da 10 kDa. I campioni sono stati ulteriormente purificati utilizzando le colonne S6increase per le varianti spike e la colonna S200increase per l’RBD.
ELISA SARS-CoV-2
Gli ELISA SARS-CoV-2 sono stati eseguiti come descritto in precedenza ( 2 , 5 , 82). In breve, le piastre Corning da 96 pozzetti (ThermoFisher 3690) sono state rivestite con 1 μg/ml di antigene durante la notte a 4°C. Gli antigeni includevano la proteina RBD SARS-CoV-2 ricombinante, la proteina spike ricombinante e la proteina nucleocapside ricombinante (GenScript Z03488) [antigeni nucleocapside ricombinanti sono stati testati anche da Sino Biological (40588-V07E) e Invivogen (his-sars2-n) e hanno prodotto risultati comparabili risultati al nucleocapside GenScript]. Il giorno successivo, le piastre sono state bloccate con latte al 3% in soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) contenente Tween-20 allo 0,05% per 1,5 ore a temperatura ambiente. Il plasma è stato inattivato al calore a 56°C per 30-60 min. Il plasma è stato diluito in latte all’1% contenente Tween-20 allo 0,05% in PBS partendo da una diluizione 1:3 seguita da diluizioni seriali per tre e incubato per 1,5 ore a temperatura ambiente. Le piastre sono state lavate cinque volte con 0. 05% PBS-Tween-20. Gli anticorpi secondari sono stati diluiti in latte all’1% contenente lo 0,05% di Tween-20 in PBS. Per le IgG, è stato utilizzato l’anticorpo anti perossidasi IgG umane prodotto in capra (Sigma A6029) a una diluizione 1:5.000. Per le IgA, è stato utilizzato un anticorpo anti-IgA umano perossidasi di rafano (Hybridoma Reagent Laboratory HP6123-HRP) a una diluizione 1:1.000. L’anti-IgA monoclonale HP6123 è stato utilizzato per la sua specificità convalidata dai CDC e dall’OMS per IgA1 e IgA2 umane e per la mancanza di cross-reattività con isotipi non IgA (83 ).
I titoli degli end-point sono stati tracciati per ciascun campione, utilizzando i dati sottratti dal background. Sono stati utilizzati controlli negativi e positivi per standardizzare ciascun dosaggio e normalizzare tra gli esperimenti. È stato creato uno standard di controllo positivo riunendo il plasma di sei donatori convalescenti di COVID-19 per normalizzare tra gli esperimenti. Il limite di rilevazione (LOD) è stato definito come 1:3 per IgG, 1:10 per IgA. Il limite di sensibilità (LOS) per gli individui infetti da SARS-CoV-2 è stato stabilito sulla base di soggetti non infetti, utilizzando plasma proveniente da donatori sani normali mai esposti a SARS-CoV-2. Per le analisi trasversali, è stata eseguita la modellazione per la curva di adattamento migliore (ad esempio, un decadimento di fase rispetto alla semplice regressione lineare) utilizzando GraphPad Prism 8.0. Il miglior adattamento della curva è stato definito da un test F extra della somma dei quadrati, selezionando il modello più semplice a meno che P< 0,05 ( 84 ). Il decadimento continuo (regressione lineare), il decadimento a una fase o il decadimento a due fasi dei dati di log sono stati valutati in tutti i casi, con il modello statistico più appropriato scelto sulla base del test F; in molti casi è stato considerato anche un fit di equazioni quadratiche. Per calcolare il t 1/2 , log 2 dati -transformed sono stati utilizzati. Utilizzando la curva di miglior adattamento, è stato utilizzato un adattamento non lineare del decadimento a una fase o una semplice regressione lineare (decadimento continuo). Per semplici regressioni lineari, R di Pearson è stato calcolato per la correlazione utilizzando dati trasformati in log 2 . Per l’adattamento non lineare del decadimento a una fase, Rè stato riportato. Per i campioni longitudinali, è stata eseguita una semplice regressione lineare, con t 1/2 calcolato dai dati trasformati in log 2 per ciascuna coppia. Per le analisi di genere, la modellazione e t 1/2 sono state eseguite in modo simile alle analisi trasversali; ANCOVA (VassarStats o GraphPad Prism 8.4) è stato quindi eseguito tra set di dati maschili e femminili. ANCOVA p- value delle medie aggiustate sono stati riportati e considerati significativi se il test per l’omogeneità delle regressioni non era significativo.
Saggi di anticorpi neutralizzanti
Il saggio dell’anticorpo neutralizzante lo pseudovirus è stato eseguito come descritto in precedenza ( 5 ). In breve, le cellule Vero sono state seminate in piastre da 96 pozzetti per produrre un monostrato al momento dell’infezione. Quantità pretitolate di rVSV-SARS-Cov-2 [phCMV3-SARS-CoV-2 spike SARS-CoV-2-pseduotipizzato VSV-ΔG-GFP (proteina fluorescente verde) sono state generate trasfettando cellule HEK293T, ATCC CRL-3216] sono state incubate con plasma umano diluito in serie a 37 ° C per 1 ora prima dell’aggiunta a monostrati di cellule Vero confluenti (ATCC CCL-81) in piastre da 96 pozzetti. Le cellule sono state incubate per 12-16 ore a 37°C in 5% CO2 .Le cellule sono state quindi fissate in paraformaldeide al 4%, colorate con 1 μg/ml di Hoechst e riprese con un imager CellInsight CX5 per quantificare il numero totale di cellule che esprimono GFP. L’infezione è stata normalizzata al numero medio di cellule infettate da rVSV-SARS-CoV-2 incubate con plasma umano normale. Il LOD è stato stabilito come <1:20 sulla base di campioni di plasma provenienti da una serie di soggetti di controllo non esposti. I segnali negativi sono stati impostati su 1:19. Neutralizzazione IC 50 (mediana concentrazione inibente) titoli sono stati calcolati utilizzando One-Site Fit LogIC50 regressione GraphPad Prism 8.0.
Rilevamento di cellule B di memoria antigene-specifiche
Per rilevare le cellule B specifiche per SARS-CoV-2, gli antigeni proteici biotinilati sono stati multimerizzati individualmente con streptavidina marcata in modo fluorescente a 4°C per 1 ora. Il picco di SARS-CoV-2 a tutta lunghezza (stabilizzato da 2P, doppia etichetta con Strep) e RBD sono stati generati internamente. La biotinilazione è stata eseguita utilizzando il kit di reazione standard della biotina-proteina ligasi (Avidity, catalogo n. Bir500A) seguendo il protocollo standard del produttore e dializzato durante la notte contro PBS. Lo spike biotinilato è stato miscelato con streptavidina BV421 (BioLegend, n. di catalogo 405225) e streptavidina Alexa Fluor 647 (Thermo Fisher Scientific, n. di catalogo S21374) con un rapporto 20:1 (~6:1 rapporto molare). Il RBD biotinilato è stato miscelato con streptavidina ficoeritrina (PE)/Cyanine7 (BioLegend, n. di catalogo 405206) in un rapporto di 2,2:1 (rapporto molare di ~4:1). Nucleocapside biotinilato SARS-CoV-2 a lunghezza intera (con tag Avi e His; Sino Biological, catalogo n. 40588-V27B-B) è stato multimerizzato utilizzando streptavidina PE (BioLegend, n. di catalogo 405204) e streptavidina BV711 (BioLegend, n. di catalogo 405241) con un rapporto 5,5:1 (~6:1 rapporto molare). Streptavidina PE/Cyanine5.5 (Thermo Fisher Scientific, catalogo n. SA1018) è stata utilizzata come sonda esca per eliminare le cellule B non specifiche che legano la streptavidina SARS-CoV-2. Le sonde antigene preparate singolarmente come sopra sono state quindi miscelate in Brilliant Buffer (BD Bioscience, n. di catalogo 566349) contenente 5 μM di d-biotina libera (Avidity, n. di catalogo Bir500A). La d-biotina libera ha garantito una reattività crociata minima delle sonde dell’antigene. Circa 10 5 (Thermo Fisher Scientific, catalogo n. SA1018) è stato utilizzato come sonda esca per escludere le cellule B non specifiche che legano la streptavidina SARS-CoV-2. Le sonde antigene preparate singolarmente come sopra sono state quindi miscelate in Brilliant Buffer (BD Bioscience, n. di catalogo 566349) contenente 5 μM di d-biotina libera (Avidity, n. di catalogo Bir500A). La d-biotina libera ha garantito una reattività crociata minima delle sonde dell’antigene. Circa 10 5 (Thermo Fisher Scientific, catalogo n. SA1018) è stato utilizzato come sonda esca per escludere le cellule B non specifiche che legano la streptavidina SARS-CoV-2. Le sonde antigene preparate singolarmente come sopra sono state quindi miscelate in Brilliant Buffer (BD Bioscience, n. di catalogo 566349) contenente 5 μM di d-biotina libera (Avidity, n. di catalogo Bir500A). La d-biotina libera ha garantito una reattività crociata minima delle sonde dell’antigene. Circa 107 campioni di PBMC precedentemente congelati sono stati preparati in piastre da 96 pozzetti con fondo a U e colorati con 50 µl di cocktail di sonde antigeniche contenente 100 ng di spike per sonda (totale 200 ng), 27,5 ng di RBD, 40 ng di nucleocapside per sonda (totale 80 ng) e 20 ng di streptavidina PE/Cyanine5.5 a 4°C per 1 ora per garantire la massima qualità di colorazione prima che la colorazione superficiale con anticorpi come elencato nella tabella S1 sia eseguita in Brilliant Buffer a 4°C per 30 min. Le cellule morte sono state colorate utilizzando LIVE/DEAD Fixable Blue Stain Kit (Thermo Fisher Scientific, n. di catalogo L34962) in DPBS a 4°C per 30 min. Circa l’80% delle cellule B della memoria antigene-specifica (IgD – e/o CD27 + ) rilevate utilizzando questo metodo erano IgM + , IgG + o IgM – IgG– IgA + , che erano paragonabili alle cellule B di memoria non specifiche. Sulla base di queste osservazioni, abbiamo concluso che le sonde dell’antigene non hanno influito sostanzialmente sulla qualità della colorazione delle immunoglobuline di superficie. I campioni di PBMC colorati sono stati acquisiti su Cytek Aurora e analizzati utilizzando FlowJo10.7.1 (BD Bioscience).
La frequenza delle cellule B di memoria antigene-specifiche è stata espressa come percentuale delle cellule B totali (CD19 + CD20 + CD38 int/– , CD3 – , CD14 – , CD16 – , CD56 – , LIVE/DEAD – , linfociti), o come numero per 10 6 PBMC (LIVE/DEAD – cellule). LOD è stato impostato sulla base della mediana + 2 × deviazione standard (DS) di [1/(numero di cellule B totali registrate)] o della mediana + 2 × SD di [10 6/(numero di PBMC registrati)]. La LOS è stata impostata come mediana + 2 × SD dei risultati in donatori non esposti. L’analisi del fenotipo delle cellule B antigene-specifiche è stata eseguita solo in soggetti con almeno 10 cellule rilevate nella rispettiva porta delle cellule B di memoria antigene-specifica. In ogni esperimento, sono stati inclusi PBMC da un controllo positivo noto (soggetto convalescente COVID-19) e soggetti non esposti per garantire una sensibilità e una specificità coerenti del test. Per ogni set di dati sono stati considerati modelli cinetici polinomiali di secondo ordine, regressione lineare semplice e pseudo-primo ordine. Il modello con un valore del criterio di informazione di Akaike più basso è stato determinato per essere un adattamento migliore e visualizzato.
Analisi delle cellule T dei marcatori indotti dall’attivazione (AIM)
Le cellule T CD4 + antigene-specifiche sono state misurate come percentuale di cellule AIM + (OX40 + CD137 + ) CD4 + T e (CD69 + CD137 + ) CD8 + T dopo stimolazione di PBMC con megapool di peptidi (MP) sovrapposti che coprono l’intera SARS -CoV-2 ORFeome, come precedentemente descritto ( 2 ). Le cellule sono state coltivate per 24 ore in presenza di MP specifici per SARS-CoV-2 (1 μg/ml) o 5 μg/ml di fitoemoagglutinina (PHA, Roche) in piastre con fondo a U da 96 pozzetti a 1 × 10 6 PBMC per bene. La stimolazione con una quantità equimolare di dimetilsolfossido (DMSO) è stata eseguita come controllo negativo. PHA e stimolazione con un CD4 . combinato+ e CD8 + epitopo MP del citomegalovirus (CMV, 1 μg/ml) sono stati inclusi come controlli positivi. Qualsiasi campione con un segnale PHA basso è stato escluso come controllo di qualità.
Le cellule T CD4 + e CD8 + antigene-specifiche sono state misurate come dati sottratti di sfondo (DMSO), con un livello minimo di DMSO impostato su 0,005%. Tutti gli ORF positivi (>0,02% per CD4 + , >0,05% per CD8 + ) sono stati quindi aggregati in una somma combinata di cellule CD4 + o CD8 + specifiche per SARS-CoV-2 . La soglia di positività per le risposte delle cellule CD4 + T antigene-specifiche (0,03%) e le risposte delle cellule T CD8 + antigene-specifiche (0,12%) è stata calcolata utilizzando la doppia deviazione standard mediana di tutti i controlli negativi misurati (>150). Il pannello di anticorpi utilizzato nel (OX40 + CD137 + ) CD4 +T e (CD69 + CD137 + ) CD8 + cellule T La colorazione AIM è mostrata nella tabella S2. È stata eseguita un’analisi di coerenza per misurazioni multiple dei test delle cellule T AIM da due diversi operatori. Prima della fusione, abbiamo confrontato l’immunodominanza proteica, le risposte totali delle cellule T CD4 + e CD8 + specifiche per SARS-CoV-2 e i calcoli dell’emivita tra i due gruppi di dati sperimentali. Nelle analisi longitudinali, i calcoli dell’emivita hanno escluso tutti i campioni negativi in entrambi i momenti (perché non è stato possibile calcolare un’emivita), sebbene tutti i dati siano stati inclusi nei grafici.
Per i saggi AIM di superficie CD40L + OX40 + CD4 + cellule T, gli esperimenti sono stati eseguiti come descritto in precedenza ( 5 ), con le seguenti modifiche. Le cellule sono state coltivate in RPMI completo contenente siero AB umano al 5% (Gemini Bioproducts), -mercaptoetanolo, penicillina/streptomicina, piruvato di sodio (NaPy) e amminoacidi non essenziali. Prima dell’aggiunta di MP peptidici, le cellule sono state bloccate a 37 ° C per 15 minuti con 0,5 μg/ml di mAb anti-CD40 (Miltenyi Biotec). È stata eseguita una stimolazione con una quantità equimolare di DMSO per determinare la sottrazione del fondo e l’attivazione da enterotossina stafilococcica B (SEB) a 1 μg/ml è stata utilizzata come controllo di qualità (positivo). LOD per cT FH antigene-specifico tra CD4 +Le cellule T si basavano sul LOD per le cellule CD4 + T antigene-specifiche (descritte sopra) moltiplicato per la % media di cT FH nelle cellule T CD4 di massa tra i campioni di controllo. Una soglia di inclusione di dieci eventi dopo il gate cT FH CXCR5 + è stata utilizzata per i calcoli di PD-1 hi e CCR6 + e per i rispettivi confronti sono stati applicati i test statistici non parametrici di Mann-Whitney e Wilcoxon.